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DOI: 10.3791/62046-v
Charisse Y. J. Kuo*1, Henry H. Louie1, Ilva D. Rupenthal1, Odunayo O. Mugisho*1
1Buchanan Ocular Therapeutics Unit, Department of Ophthalmology and the New Zealand National Eye Centre,University of Auckland
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Este estudo tem como objetivo desenvolver um novo modelo de cultura de retina organotípica humana (HORC) que previne comprometer a integridade da retina durante o manuseio da explant. Isso é conseguido através da cultura da retina com o vítreo sobrelada e o pigmento de retina subjacente epitélio-coroide (RPE-choroid) e esclera.
Esta técnica preserva todas as camadas de retina e tipos de células in situ, tornando-a mais clinicamente relevante em compara??o com modelos animais e in vitro. A principal vantagem deste protocolo é que ele minimiza a interrup??o da integridade da retina durante o manuseio do tecido, o que é essencial na compara??o da retina saudável e doente. Doen?as da retina podem ser imitadas por cultura do tecido em condi??es específicas.
Isso permite testar novas terapias medicamentosas. Os procedimentos de dissec??o e coleta de amostras s?o complexos. Portanto, a demonstra??o visual é fundamental para ajudar os leitores a entender o protocolo escrito e conduzir o procedimento com sucesso.
Demonstrando o procedimento estará Charisse Kuo, aluna do segundo ano de doutorado do meu laboratório. Prepare o meio de cultura contendo a mistura de médio/nutriente modificado da ?guia Modificada de Dulbecco F-12 e uma mistura de antibióticos e antimícticos uma vez. Primeiro, coloque 500 microliters de médio em uma placa de 24 po?os e equilibre-o em uma incubadora umidificada a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono.
Ter a mídia pronta antes da extra??o de explant evita o desalojar da retina após a adi??o subsequente. Para extrair explana??es de retina, comece colocando a xícara ocular em uma placa de Petri com a íris e a lente voltadas para cima e o ONH entrando em contato com a placa de Petri. Segure a xícara ocular firme no limbus usando fórceps e desprende a íris e a lente fazendo pequenos cortes circunferencialmente ao longo da borda externa do limbus.
Remova a íris e a lente cuidadosamente, certificando-se de evitar perturbar a retina. Identifique o ONH usando uma fonte de luz branca brilhante e inciso nos quatro quadrantes em dire??o ao ONH girando a placa de Petri para facilitar o manuseio. Espalhe e achate a opaia cuidadosamente.
Aplique as fórceps na esclera em vez da retina para evitar interromper a integridade da retina. Remova a placa que contém a mídia preparada da incubadora. Coloque uma trefina cirúrgica na retina em uma regi?o sem dobras de retina e pressione fortemente para penetrar a esclera, o que deve gerar um som de rachaduras à medida que você rompe a placa de Petri.
Gire a trefina para garantir que a esclera tenha sido penetrada totalmente de tal forma que a explanta da retina esteja agora separada do resto da amostra. Aplique as fórceps na esclera e transfira a explanta de retina sanduíche para o meio de cultura. Cultura o sanduíche coletado explanta retina a 37 graus Celsius por até 72 horas em uma incubadora umidificada de 5% de dióxido de carbono.
A hematoxilina e a colora??o de eosina mostraram que as explana??es de retina do sanduíche preservavam a integridade e uma estrutura lamellae distinta do GCL ao ONL com núcleos compactos nas camadas nucleares internas e externas. A integridade da retina interrompida foi encontrada nas bordas da mesma amostra onde a retina se desprendeu do coroide e esclera rpe subjacente mostrando redu??o da espessura da retina e perda de núcleos no INL e ONL. Nenhum núcleo celular tunel positivo, que marca a apoptose celular, foram encontrados em explana??es de retina cultivadas em condi??es basais, demonstrando vitalidade celular sustentada mesmo após 72 horas.
A rotulagem GFAP foi restrita à GCL e ao IPL sem fibrose gliana, um sinal de patologia que seria identificada como express?o estendida de GFAP no ONL. Vimentina foi altamente expressa da camada de células g?nglios para a camada nuclear externa, mostrando a integridade celular de Mueller preservada como visto em tecidos normais da retina. O ensaio magnético luminex mostrou que os níveis IL-18, VEGF, IL-6 e IL-8 aumentaram significativamente acima da linha de base nas culturas de explante de retina sanduíche em alta glicose e citocinas pró-inflamatórias após 24 horas.
Após 72 horas, os níveis IL-18 e VEGF permaneceram significativamente aumentados, mas nenhuma diferen?a significativa foi encontrada nos níveis IL-6 e IL-8. Ao realizar este procedimento, deixe o suficiente de vítreo residual suficiente, que pesará a retina para baixo para que n?o se desprende do RP choroide e flutue na mídia cultural. A retina cultivada pode ser ainda caracterizada usando imunestoquímica e histologia, enquanto as citocinas inflamatórias liberadas no meio cultivado podem ser medidas usando um ensaio magnético Luminex.
Este modelo é mais clinicamente traduzível em compara??o com modelos animais e in vitro, o que torna mais adequado para testar a eficácia de novos fármacos terapêuticos para doen?as da retina.
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